近几十年来,学者们利用间充质干细胞(MSCs)对包括系统性红斑狼疮在内的复发难治性自身免疫性疾病进行了多项临床试验,取得了令人鼓舞的结果。
干细胞移植如何成为治疗难治性狼疮肾炎的潜在疗法?
干细胞移植已成为治疗难治性狼疮肾炎(LN)的一种潜在疗法,主要通过间充质干细胞(MSCs)的应用实现。以下是干细胞移植在治疗LN中的主要机制和应用情况:
- 治疗机制:
- 免疫调节:MSCs能够通过与免疫细胞(如T细胞、B细胞、巨噬细胞和DC细胞)的相互作用,调节免疫反应,减少过度的免疫反应。
- 归巢与修复:MSCs具有归巢到炎症部位的能力,能够特异性地迁移到损伤的肾脏组织,促进组织的修复和再生。
- 营养因子产生:MSCs还能释放生长因子和促血管生成因子,保护受损的肾脏组织,促进肾小球和肾小管的恢复。
- 临床应用:
- 临床试验:多项临床试验显示,MSCs移植在治疗难治性LN方面显示出积极的效果。例如,南京大学医学院附属鼓楼医院的研究报告显示,异基因间充质干细胞移植在4名难治性LN患者中显示出病情的稳定缓解,且在12至18个月的随访中,所有患者的病情均有改善。
- 长期疗效:长期随访研究显示,MSCs移植具有良好的临床安全性,总生存率为94%,约50%的患者在随访期间达到并保持临床缓解。
- 安全性与副作用:
- 在MSCs移植的临床试验中,患者未报告严重的不良事件,表明这种治疗方法相对安全。
总之,干细胞移植通过其免疫调节、归巢与修复以及营养因子产生等机制,为难治性LN提供了一种有前景的治疗选择。尽管仍需进一步的研究来优化治疗方案和确保其安全性和有效性,但干细胞移植在治疗LN方面已经显示出了显著的疗效和潜力。
什么是狼疮性肾炎-导致狼疮性肾炎的原因及治疗方法
系统性红斑狼疮(SLE)是一种多器官自身免疫性疾病,主要影响年轻女性,与男性人群相比,发病率约为 9:1。SLE的主要和毁灭性并发症之一是狼疮性肾炎 (LN),它也是除心血管疾病和感染之外系统性红斑狼疮导致死亡的最常见原因之一。
LN的发生主要是由于肾小球中免疫复合物沉积导致肾内炎症和组织损伤。肾外机制包括异常淋巴细胞增殖和核酸清除受损。
目前治疗狼疮性肾炎的主要方法
LN治疗的主要方法是免疫抑制治疗,根据肾活检分类选择药物治疗方案。在过去的几十年里,免疫抑制治疗的进步显着改善了LN患者的疾病结果。然而,从2000年代开始,进一步治疗的局限性造成了结果改善的平台期。LN结果改善缺乏进展可能是由多种因素造成的,例如当前疗法疗效的限制和药物不良反应的无法耐受。
除此之外,一些LN病例对环磷酰胺等标准免疫抑制治疗无效。目前的情况需要新的LN治疗方式。一种有希望的治疗方法是基于干细胞治疗,例如间充质干细胞(MSC)移植(MSCT)。最近显示间充质干细胞移植在自身免疫性疾病中的作用,如类风湿性关节炎、多发性硬化症、系统性硬化症、1型糖尿病和炎症性肠病。
目前的证据还表明,间充质干细胞移植可以改善无肾脏受累的系统性红斑狼疮患者的疾病活动度。然而,目前利用间充质干细胞移植治疗人体狼疮性肾炎的人体研究仍然有限。
干细胞移植治疗难治性狼疮性肾炎的临床研究
2023年,印度尼西亚大学医学院内科系风湿病科决定进行一项系统评价,旨在严格评估有关间充质干细胞移植对狼疮性肾炎患者有效性的当前证据。
该系统评价“间充质干细胞移植作为难治性狼疮性肾炎的潜在治疗方法:系统评价”结果发表在国际期刊《Rheumatology & Autoimmunity》上。
该系统评价研究评估的结果包括疾病活动度评估,包括系统性红斑狼疮疾病活动指数 (SLEDAI) 评分、尿蛋白水平和抗双链DNA (抗 dsDNA) 水平。
结果表明间充质干细胞移植可能有效,尤其是对于严重或难治性狼疮性肾炎。需要更多随机对照试验来支持这一证据。
方法
已发表的文章于2022年5月从数据库中系统提取。研究的质量使用牛津循证医学中心关键评估清单进行评估。
使用PRISMA流程图对2012年5月至2023年4月发表的原始文章进行筛选和提取,如图1所示。
研究纳入标准如下:(1)探讨MSCT在LN中的作用;(2)年满18周岁的患者;(3) 研究分析是在随机对照试验(RCT)或临床试验的系统评价和荟萃分析中进行的。排除以下方面的研究:(1) 英语以外的语言,(2) 疾病活动评估以外的结果,(3) 无法获得全文文章,以及 (4) 使用 MSCT 以外的另一种基于干细胞的疗法,例如造血干细胞疗法。
结果
其中包括四项研究。所有研究均招募了严重或难治性狼疮性肾炎患者,结果显示间充质干细胞移植后24小时蛋白尿有显着改善。
然而,MSCT后肾功能的改善在1个月随访后的研究之间并不一致,一项研究显示3个月后估计肾小球滤过率恶化,另一项研究显示6个月和9个月时血清肌酐增加。此外,所有研究均显示间充质干细胞移植后系统性红斑狼疮疾病活动指数评分有所改善,而两项研究表明间充质干细胞移植后抗双链DNA(抗 dsDNA)水平的下降仅在长达1个月的时间内明显下降。
关键点
- 难治性狼疮性肾炎(LN)已成为一个新出现的问题,其发病率和死亡率较高,同时新治疗方法的发现也存在局限性。
- 间充质干细胞移植 (MSCT) 已被证明对多种自身免疫性疾病和风湿性疾病有效,因此推测它在LN中发挥作用。
- 在本系统评价中,与标准治疗相比,MSCT显示24小时尿蛋白和系统性红斑狼疮疾病活动指数评分有所改善,但肾功能和抗dsDNA滴度的结果不一致。
- 干细胞移植可能成为难治性狼疮肾炎的一种选择性治疗方法,但需要进一步的随机对照试验来阐明其在LN治疗中的作用。
详细结果
所有研究受试者均被诊断为III级和IV级难治性狼疮肾炎,并接受来自脂肪组织、骨髓和/或脐带的MSC,总共105名受试者。此外,一项研究还增加了由六名接受安慰剂的受试者组成的对照组。MSCs的剂量根据MSCs的来源而不同,随访时间从6个月到12个月不等。最后,通过检测尿蛋白、SLEDAI或SLEDAI-2K评分以及血清肌酐来评估治疗效果。两项研究还增加了抗dsDNA水平作为治疗结果。
四项研究评估了MCS治疗后在不同观察时间内的24小时尿蛋白,如表3所示。所有研究均显示与MSCT前相比,尿蛋白水平显着下降。此外,两项研究评估了长达12个月的随访期间的尿蛋白。Gu等人的研究显示,尿蛋白从第一个月的2.06g/24h到第12个月的1.52g/24h呈下降趋势,有统计学意义;而Ranjbar等人的研究显示,尿蛋白呈下降趋势,有统计学意义。尿蛋白水平从第一周的1.02克/24小时反弹到第三个月的1.7克/24小时,再到第12个月的1.9克/24小时,尽管统计学上并不显着。
所有研究均评估肌酐清除率,如表3所示。与MSCT之前相比,所有研究中肌酐清除率都有显着改善。
四分之三的研究测量了间充质干细胞移植前后的抗dsDNA水平,如表4所示。所有研究中抗dsDNA水平均持续降低。然而,在Gu等人中,直到第12个月都可以看到逐渐下降,而Ranjbar等人则显示抗dsDNA水平从第3个月开始出现波动,尽管统计上并不显着。
为了评估疾病活动性,所有四项研究均测量了SLEDAI-2K,如表4所示。所有研究均显示,间充质干细胞移植后评估SLEDAI评分后,疾病活动度显着改善。直到第12个月都可以看到持续的逐步改善(表5)。
讨论
间充质干细胞是多能祖细胞,可分化为成骨细胞、脂肪细胞、肌细胞、软骨细胞和其他细胞类型。MSC具有免疫调节特性,可用于治疗自身免疫性疾病,包括SLE和LN。
所有研究均表明,经过1至12个月的不同随访期,蛋白尿有所改善。1个月随访后,各研究之间的肾功能改善情况不一致。
本系统评价中评价的所有研究还表明疾病活动性有所改善,使用SLEDAI评分和血清抗dsDNA进行评估。本系统评价中评价的所有研究均成功证明了SLEDAI评分的显著改善。
结论
总之,间充质干细胞移植在减少狼疮性肾炎疾病活动方面具有潜在作用,特别是在标准免疫抑制治疗难治的病例中,尽管由于缺乏研究和间充质干细胞来源的异质性而存在局限性。需要更多样本量更大的随机、双盲、安慰剂对照试验,以进一步加强关于在狼疮性肾炎中使用间充质干细胞移植的证据。
参考资料:
1.Weckerle CE, Niewold TB. The unexplained female predominance of systemic lupus erythematosus: clues from genetic and cytokine studies. Clin Rev Allergy Immunol. 2011;40(1):42‐49. doi:10.1007/S12016-009-8192-4
2.Stojan G, Petri M. Epidemiology of systemic lupus erythematosus: an update. Curr Opin Rheumatol. 2018;30(2):144‐150. doi:10.1097/BOR.0000000000000480
3.Choi HS, Han KD, Jung JH, et al. The risk of end‐stage renal disease in systemic lupus erythematosus: a nationwide population‐based study in Korea. Medicine. 2019;98(28):e16420. doi:10.1097/MD.0000000000016420
4.Obrișcă B, Sorohan B, Tuță L, Ismail G. Advances in lupus nephritis pathogenesis: from bench to bedside. Int J Mol Sci. 2021;22(7):3766. doi:10.3390/IJMS22073766
5.Hoover PJ, Costenbader KH. Insights into the epidemiology and management of lupus nephritis from the US rheumatologist’s perspective. Kidney Int. 2016;90(3):487‐492. doi:10.1016/J.KINT.2016.03.042
6.Tektonidou MG, Dasgupta A, Ward MM. Risk of end‐stage renal disease in patients with lupus nephritis, 1971–2015: a systematic review and Bayesian meta‐analysis. Arthritis Rheumatol. 2016;68(6):1432‐1441. doi:10.1002/ART.39594
7.Bello AK, Alrukhaimi M, Ashuntantang GE, et al. Complications of chronic kidney disease: current state, knowledge gaps, and strategy for action. Kidney Int Suppl. 2017;7(2):122‐129. doi:10.1016/J.KISU.2017.07.007
8.Thompson JC, Mahajan A, Scott DA, Gairy K. The economic burden of lupus nephritis: a systematic literature review. Rheumatol Ther. 2022;9(1):25‐47. doi:10.1007/S40744-021-00368-Y
9.Shin JI, Li H, Park S, et al. Induction and maintenance treatment of lupus nephritis: a comprehensive review of meta‐analyses. J Clin Med. 2022;11(2):343. doi:10.3390/JCM11020343
10.Jasim SA, Yumashev AV, Abdelbasset WK, et al. Shining the light on clinical application of mesenchymal stem cell therapy in autoimmune diseases. Stem Cell Res Ther. 2022;13(1):101. doi:10.1186/S13287-022-02782-7
11.Liu S, Guo YL, Yang JY, Wang W, Xu J. Efficacy of mesenchymal stem cells on systemic lupus erythematosus: a meta‐analysis. Beijing Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2018;50(6):1014‐1021.
12.Deng D, Zhang P, Guo Y, Lim TO. A randomised double‐blind, placebo‐controlled trial of allogeneic umbilical cord‐derived mesenchymal stem cell for lupus nephritis. Ann Rheum Dis. 2017;76(8):1436‐1439. doi:10.1136/ANNRHEUMDIS-2017-211073
13.Barbado J, Tabera S, Sánchez A, García‐Sancho J. Therapeutic potential of allogeneic mesenchymal stromal cells transplantation for lupus nephritis. Lupus. 2018;27(13):2161‐2165. doi:10.1177/0961203318804922
14.Ranjbar A, Hassanzadeh H, Jahandoust F, et al. Allogeneic adipose‐derived mesenchymal stromal cell transplantation for refractory lupus nephritis: results of a phase I clinical trial. Curr Res Transl Med. 2022;70(2):103324. doi:10.1016/J.RETRAM.2021.103324
15.Gu F, Wang D, Zhang H, et al. Allogeneic mesenchymal stem cell transplantation for lupus nephritis patients refractory to conventional therapy. Clin Rheumatol. 2014;33(11):1611‐1619. doi:10.1007/S10067-014-2754-4
16.Tang WY, Liu JH, Peng CJ, et al. Functional characteristics and application of mesenchymal stem cells in systemic lupus erythematosus. Arch Immunol Ther Exp. 2021;69(1):7. doi:10.1007/S00005-021-00603-Y
17.Li W, Chen W, Sun L. An update for mesenchymal stem cell therapy in lupus nephritis. Kidney Dis. 2021;7(2):79‐89. doi:10.1159/000513741
18.Kunter U, Rong S, Moeller MJ, Floege J. Mesenchymal stem cells as a therapeutic approach to glomerular diseases: benefits and risks. Kidney Int Suppl. 2011;1(3):68‐73. doi:10.1038/KISUP.2011.16
19.Li A, Guo F, Pan Q, et al. Mesenchymal stem cell therapy: hope for patients with systemic lupus erythematosus. Front Immunol. 2021;12:4062. doi:10.3389/FIMMU.2021.728190/BIBTEX
20.Li J, Luo M, Li B, et al. Immunomodulatory activity of mesenchymal stem cells in lupus nephritis: advances and applications. Front Immunol. 2022;13:941. doi:10.3389/FIMMU.2022.843192/BIBTEX
21.Thiel A, Yavanian G, Nastke MD, et al. Human embryonic stem cell‐derived mesenchymal cells preserve kidney function and extend lifespan in NZB/W F1 mouse model of lupus nephritis. Sci Rep. 2015;5:17685. doi:10.1038/SREP17685
22.Yuan Y, Yuan L, Li L, et al. Mitochondrial transfer from mesenchymal stem cells to macrophages restricts inflammation and alleviates kidney injury in diabetic nephropathy mice via PGC‐1α activation. Stem Cells. 2021;39(7):913‐928. doi:10.1002/STEM.3375
23.Yang Q, Liu Y, Chen G, Zhang W, Tang S, Zhou T. An overview of the safety, efficiency, and signal pathways of stem cell therapy for systemic lupus erythematosus. Stem Cells Int. 2021;2021:1‐8. doi:10.1155/2021/2168595
24.González Rodríguez C, Aparicio Hernández B, Alarcón Torres I. Update and clinical management of anti‐DNA auto‐antibodies. Adv Lab Med/Av Med Lab. 2021;2(3):313‐321. doi:10.1515/ALMED-2021-0008/PDF
25.Zhou T, Liao C, Li HY, Lin W, Lin S, Zhong H. Efficacy of mesenchymal stem cells in animal models of lupus nephritis: a meta‐analysis. Stem Cell Res Ther. 2020;11(1):48. doi:10.1186/S13287-019-1538-9/FIGURES/6
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